Un éclairage pragmatique pour préparer la période froide
Le virus respiratoire syncytial bovin, en anglais Bovine Respiratory Syncytial Virus (BRSV), est un virus à simple brin1,2 de la famille Pneumoviridae. Le BRSV a été renommé Bovine orthopneumovirus en 2016 puis Orthopneumovirus bovis en 20221. Il est l’un des principaux agents pathogènes impliqués dans le Complexe Respiratoire Bovin (CRB) et cause d’importantes pertes économiques dans l’industrie de l’élevage.
UNE MALADIE SAISONNIERE
Le BRSV est un virus que l’on retrouve dans le monde entier3 et est particulièrement présent dans les zones tempérées. En Europe, 40 à 80 % selon les régions et les populations étudiées de bovins seraient porteurs d’anticorps anti-BRSV. Son infection peut prédisposer les bovins à une infection bactérienne secondaire par des organismes tels que Mannheimia haemolytica, Pasteurella multocida, Histophilus somni ou Mycoplasma bovis4. Il est particulièrement contagieux et peut survivre un certain temps dans l’environnement (froid, humidité).
Le BRSV circule surtout en fin d’automne et en hiver5, avec un pic marqué entre novembre et février dans la majorité des régions tempérées (France, Europe du Nord, Amérique du Nord).
Pourquoi cette période ?
| Bâtiments fermés Ventilation réduite & accumulation d’aérosols viraux. | Animaux regroupés Contacts rapprochés = transmission facilitée.. | ||
| Froid + humidité Survie du virus dans l’environnement augmentée.. | Stress thermique Immunité diminuée. |
TRANSMISSION ET SYMPTÔMES : UN DEFI POUR L'INDUSTRIE DE L'ELEVAGE
La transmission du BRSV s’effectue via des gouttelettes aérosol, par un contact direct avec un animal infecté ou indirectement par contact avec des surfaces contaminées6,7. Les animaux infectés peuvent excréter avant même les premiers symptômes.
Les signes cliniques apparaissent souvent 7 à 10 jours suivant un évènement stressant, comme par exemple le transport de l’animal4.
Le BRSV attaque l’appareil respiratoire, surtout les bronchioles et les alvéoles, provoquant :
Le BRSV peut entraîner des formes très sévères, notamment en hiver, et causer une mortalité importante dans certains troupeaux.
DIAGNOSTIC
Plusieurs méthodes de diagnostic existent :
Les tests Rhéa® sont des tests de biologie moléculaire qui détectent directement l’ADN/ARN du pathogène et peuvent donc être utilisés dès le début de l’infection avant même que les symptômes ne soient décelables. Leur sensibilité est très proche de celle de la PCR mais les résultats sont obtenus en 30 minutes. |
| Vaccination : Des veaux et/ou des mères (pour améliorer l’immunité colostrale). | Gestion environnementale : Bonne ventilation, limitation du stress, gestion des mélanges d’animaux. | ||
| Il existe 3 grandes familles de vaccins utilisés contre le BRSV : > les vaccins inactivés faits par injection souvent utilisés dans un protocole de vaccination de troupeau (vaches et veaux)11. > les vaccins atténués (intranasaux) idéaux chez les jeunes veaux mais dont la durée d’immunité est plus courte que les vaccins inactivés12. > les vaccins combinés (vivants ou inactivés) comprenant plusieurs pathogènes du CRB comme BHV-1, PI3 ou la BVDV par exemple13. | Biosécurité : Mise en quarantaine et contrôle des introductions. |
1. Walker, P. J. et al. Recent changes
to virus taxonomy ratified by the International Committee on Taxonomy of
Viruses (2022). Arch. Virol. 167, 2429–2440 (2022).
2. Rima, B. et al. ICTV Virus Taxonomy
Profile: Pneumoviridae. J. Gen. Virol. 98, 2912–2913 (2017).
3. da Silva Barcelos, L. et al.
Interactions Between Bovine Respiratory Syncytial Virus and Cattle: Aspects of
Pathogenesis and Immunity. Viruses 16, 1753 (2024).
4. Sacco, R. E., McGill, J. L.,
Pillatzki, A. E., Palmer, M. V. & Ackermann, M. R. Respiratory Syncytial
Virus Infection in Cattle. Vet. Pathol. 51, 427–436 (2014).
5. Bueno, S. M. et al. Host immunity
during RSV pathogenesis. Int. Immunopharmacol. 8, 1320–1329 (2008).
6. Bartz, H.
et al. Respiratory syncytial
virus decreases the capacity of myeloid dendritic cells to induce interferon-γ in naïve T cells. Immunology 109,
49–57 (2003).
7. Bendelja, K. et al. Decreased
Toll-like receptor 8 expression and lower TNF-alpha synthesis in infants with
acute RSV infection. Respir. Res. 11, 143 (2010).
8. Jo Mayers and Jason Sawyer. Development and evaluation of a multiplex enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of antibodies to bovine respiratory diseases on the Meso Scale Discovery platform. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 24, 4 (2012).
9. Achenbach, J. E. et al. Detection and
quantitation of bovine respiratory syncytial virus using real-time quantitative
RT-PCR and quantitative competitive RT-PCR assays. J. Virol. Methods 121, 1–6
(2004).
10. Thonur, L. et al. One-step multiplex real time RT-PCR for the detection of bovine respiratory syncytial virus, bovine herpesvirus 1 and bovine parainfluenza virus 3. BMC Vet. Res. 8, 37 (2012).
11. Martinez, D. A., Newcomer, B., Passler, T. & Chamorro, M. F. Efficacy of Bovine Respiratory Syncytial Virus Vaccines to Reduce Morbidity and Mortality in Calves Within Experimental Infection Models: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front. Vet. Sci. 9, 906636 (2022).
12. Makoschey, B. & Berge, A. C. Review on bovine respiratory syncytial virus and bovine parainfluenza – usual suspects in bovine respiratory disease – a narrative review. BMC Vet. Res. 17, 261 (2021).
13. Tapiolas, M. et al. Efficacy of a New
Multivalent Vaccine for the Control of Bovine Respiratory Disease (BRD) in a
Randomized Clinical Trial in Commercial Fattening Units. Vaccines 12,
1233 (2024).